Les méthodes scientifiques et la technologie brevetée.

Analyse de la concentration et la motilité

QualiSperm utilise un algorithme d’analyse de sperme sur la base des nouvelles technologies rendant l’analyse reproductible à tous les niveaux de concentration. Nos algorithmes des trajectoires et de corrélation d’analyse d’images, combinée avec le Lavage Numérique du sperme, fournissent des résultats rapides et précis.

Reconnaissance d’images

En utilisant un champ de vue plus grand QS est capable de capturer plus de spermatozoïdes que tous les autres systèmes CASA. L’algorithme de reconnaissance d’images peut compter jusqu’a 1000 spermatozoïdes par position après seulement 4 secondes. L’analyse de positions additionnelles améliore la statistique de façon significative.

Lavage Numérique du Sperme

Notre unique (DSW) algorithme du lavage numérique du sperme améliore de manière significative la discrimination des débris sur les images capturées. Cette technologie réduit le post-traitement et fournit des résultats de mesures précis de la concentration et la motilité.

Analyse des trajectoires

En parallèle du processus d’analyse de la concentration QS vous donne des pourcentages précis pour toutes les classes de la motilité. En capturant la vitesse moyenne (VAP) de chaque spermatozoïde QS vous donne une analyse précise des trajectoires et les fractions des quatre classes de motilités définies par l’OMS.

Analyse de corrélation d’images

L’algorithme d’analyse de corrélation d’images (Image Correlation Analysis) breveté est combiné avec l’algorithme d’analyse des trajectoires mentionné fournit des résultats excellents pour tous les niveaux de concentration. Quand la concentration est faible l’algorithme d’analyse des trajectoires est utilisé. Dans le cas contraire un autre algorithme est utilisé. En combinaison ces deux méthodes vous garantissent des résultats stables et de haut qualité.

Morphologie

Morphologie

Le module de morphologie des spermatozoïdes QualiSperm est principalement basé sur les techniques mathématiques de segmentation morphologique. Une opération de seuil dynamique locale transforme l’image de microscope niveaux de gris dans une matrice binaire.

Plusieurs filtres à base de forme-morphologiques sont appliqués pour identifier les pièces de sperme spécifiques: la tête, l’acrosome, la pièce intermédiaire et la queue. Les pièces (segmentés) de sperme identifiés sont ensuite quantifiées en termes de paramètres purement géométriques tels que la longueur, la largeur, la surface, les angles, la symétrie, le périmètre et la rugosité.

Les spermatozoïdes sont classés selon les critères l’OMS et Kruger – Tygerberg. Par exemple, une forme de tête est classée comme conique si le rapport entre la longueur de la tête et la largeur de la tête est plus élevé que son intervalle de normalité correspondante.

Publications

2017 – Conserved gene expression in sperm reservoirs between birds and mammals in response to mating
Atikuzzaman M, Alvarez-Rodriguez M, Vicente Carrillo A, Johnsson M, Wright D, Rodriguez-Martinez H.
BMC Genomics 2017; 18: 98

2017 – The CatSper channel modulates boar sperm motility during capacitation
Vicente-Carrillo A, Álvarez-Rodríguez M, Rodríguez-Martínez H.
Reproductive Biology 2017; 17: 69–78

2016 – Membrane stress during thawing elicits re-distribution of Aquaporin 7 but not of Aquaporin 9 in boar spermatozoa
Vicente-Carrillo A, Ekwall H, Álvarez-Rodríguez M, Rodríguez-Martínez H.
Reproduction in Domestic Animals 2016; 51: 665-679.

2016 – The mu (μ) and delta (δ) opioid receptors modulate boar sperm motility
Vicente-Carrillo A, Álvarez-Rodríguez M, Rodríguez-Martínez H.
Molecular Reproduction and Development 2016; 83: 724-734.

2015 – Boar spermotozoa successfully predict mitochondrial modes of toxicity: implications for drug toxicity testing and the 3R principles
Vicente-Carrillo A, Edebert I, Cotgreave H, Rigler R, Loitto V, Magnusson K E, Rodriguez-Martinez H.
Toxicology in Vitro 2015; 29: 582-591.

2011 – Boar spermatozoa peak compared to the remaining spermatozoa of the sperm-rich fraction
Siqueira A, Wallgren M, Hossain M, et al. Theriogenology 75:1175-1184.

2009 – Assessment of motility of ejaculated stallion spermatozoa using a novel computer-assisted motility analyzer (Qualisperm™)
Tejerina F, Morrell J, Petterson J, Dalin A-M & H Rodriguez-Martinez.
Animal Reprod 6: 380-385.

2009 – Colloidal centrifugation of stallion semen (during storage)
Morrell J, Johannisson A, Strutz H, et al. J Equine Vet Sci 29: 24-32.

2008 – Liquid-stored boar spermatozoa computerized instrument Assesement
Tejerina F, Buranaamnuay K, Saravia F, et al. Theriogenology 69: 1129-1138.

2008 – Influence of seminal plasma on the kinematics of boar spermatozoa during freezing
Rodriguez-Martinez H, Saravia F, Wallgren M, et al. Theriogenology 70: 1242-1250.

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